Portación nasal de Staphylococcus aureus en el personal de salud de un Hospital Pediátrico durante julio-setiembre 2018

  • Lorena Pardo Casaretto docente de Pediatría y del Departamento de Bacteriología y Virologías (Facultad de Medicina, UDELAR) http://orcid.org/0000-0002-4827-5893
  • Héctor Telechea
  • Zhenia Martínez
  • Romina Perdomo
  • Belén Pereira
  • Ana Belén Perini
  • Macarena Pica
  • Alexandra Pires
  • Lucia Puschnegg
  • Gustavo Giachetto
  • Gustavo Varela
Palabras clave: Microbiota; infecciones intrahospitalarias; Staphylococcus aureus; portación nasal, resistencia antibiótica

Resumen

Las infecciones intrahospitalarias (IIH) son causa de elevada morbimortalidad y representan un problema sanitario. El personal de salud es un reservorio y potencial transmisor de los agentes etiológicos de las mismas. S.aureus es uno de los microorganismos implicados. Es importante conocer la composición de la microbiota del personal de salud y el perfil de susceptibilidad antimicrobiana de especies relevantes asociadas a IIH para contribuir con la elaboración de medidas de prevención incluyendo actividades educativas.

Objetivo: Describir la composición predominante de la microbiota nasal cultivable en condiciones de laboratorio estándar y la frecuencia, distribución y antibiotipos de las cepas de S. aureus del personal sanitario del Hospital Pediátrico de Referencia (HPR).

Materiales y métodos: Se realizó un estudio descriptivo durante el periodo julio-setiembre del año 2018, en el que se incluyeron muestras de hisopados nasales de trabajadores de la salud de distintas áreas de internación que consintieron participar en el estudio. Se excluyeron aquellos que recibieron antibióticos dentro de los 3 meses previos al estudio. Las muestras fueron sembradas en agar sangre ovina al 5% (ASO) y se incubaron a 35-37ºC en aerobiosis por 24-48 horas. La identificación de las colonias predominantes en el 3er y 4to cuadrante se realizó por métodos convencionales y MALDI-TOF. El patrón de resistencia antimicrobiana de S. aureus se detectó por disco-difusión. En los cultivos resistentes a meticilina (SAMR) se determinó la presencia del gen mecA y se realizó la tipificación del SCCmec por reacción en cadena de polimerasa.

Resultados: Se obtuvieron 225 hisopados pertenecientes a 225 trabajadores, presentaron desarrollo 212: predominio de Gram positivos 204 (Staphylococcus coagulasa negativo155, S. aureus49); predominio de bacilos Gram negativos (BGN) 7; y Arthrobacter oxydansen uno. Correspondieron a SAMR 11 de las 49 cepas de S. aureus, todas portaban el gen mecA, con predominio en personal de enfermería (7/11) y en los servicios de hemato-oncología (3/11) y cuidados intensivos neonatales (4/11). Asociaron resistencia a macrólidos y clindamicina 8/11 aislamientos SAMR, gentamicina 2 y mupirocina uno. El SCCmec más frecuentemente identificado fue el tipo IV (7/11).

Conclusiones: Los resultados muestran la presencia de cepas SAMR y BGN entre el personal de salud del CHPR y aportan información complementaria para efectuar prevención y control de las IIH, actuando sobre todo en el personal de salud encargado de la atención de pacientes susceptibles.  

Citas

BIBLIOGRAFÍA
1. Zamora MB, Edecio D, Zamora S, Pérez VM. Infección nosocomial. Un importante problema de salud a nivel mundial. Rev Latinoam Patol Clínica y Med Lab. 2015;62(1):33–9.
2. OMS | Carga mundial de infecciones asociadas a la atención sanitaria. WHO. 2013;
3. Dulon M, Peters C, Schablon A, Nienhaus A. MRSA carriage among healthcare workers in non-outbreak settings in Europe and the United States: A systematic review. BMC Infect Dis. 2014;14(1):1–14.
4. Burgard M, Grall I, Descamps P, Zahar J-R. Infecciones nosocomiales en pediatría. EMC - Pediatría [Internet]. 2013;48(2):1–9. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/S1245-1789(13)64506-0
5. Panamericana De La Salud O. Organización Panamericana de la Salud Oficina Sanitaria Panamericana, Oficina Regional de la Organización Mundial de la Salud Módulos de principios de epidemiología para el control de enfermedades (MOPECE) Segunda Edición Revisada Unidad 2: Salud y enfermedad en la población. 2002.
6. Coordinador Digesa C. Objetivos Sanitarios Nacionales. 2015.
7. Carbonnelle É, Nassif X. Utilisation en routine du MALDI-TOF-MS pour I’identification des pathogènes en microbiologie médicale. Medecine/Sciences. 2011;27(10):882–8.
8. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). M100: Performance Standard for Antimicrobial Susceptibility testing Twenty-third Informational Supplement. [Internet]. 28th ed. Vol. 33, Clinical and Laboratory Standards Institute. 2018. 1–296 p. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11055835
9. Kondo Y, Ito T, Ma XX, Watanabe S, Kreiswirth BN, Etienne J, et al. Combination of multiplex PCRs for staphylococcal cassette chromosome mec type assignment: Rapid identification system for mec, ccr, and major differences in junkyard regions. Antimicrob Agents Chemother. 2007;51(1):264–74.
10. Fariña González N, Carpinelli L, Samudio M, Guillén R, Laspina F, Sanabria R, et al. Staphylococcus coagulasa-negativa clínicamente significativos. Especies más frecuentes y factores de virulencia. Rev Chil Infectol. 2013;30(5):480–8.
11. Telechea Ortiz H, Rodríguez M, Menchaca Noguerol A. Incidencia y etiología de la bacteriemia asociada al uso de catéteres venosos centrales en una unidad de cuidados intensivos pediátricos. Arch Pediatr Urug. 2013;84(3):181–6.
12. Fey PD, Olson ME. Current concepts in biofilm formation of Staphylococcus epidermidis. Future Microbiol [Internet]. 2010 Jun [cited 2017 Aug 10];5(6):917–33. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20521936
13. Michelim L, Lahude M, Araújo PR, Giovanaz DSH, Müller G, Delamare APL, et al. Pathogenicity factors and antimicrobial resistance of Staphylococcus epidermidis associated with nosocomial infections occurring in intensive care units. Brazilian J Microbiol. 2005;36(1):17–23.
14. Boncompain CA, Suárez CA, Morbidoni HR. Staphylococcus aureus nasal carriage in health care workers: First report from a major public hospital in Argentina. Rev Argent Microbiol [Internet]. 2017;49(2):125–31. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.ram.2016.12.007
15. Kim MW, Greenfield BK, Snyder RE, Steinmaus CM, Riley LW. The association between community-associated Staphylococcus aureus colonization and disease: A meta-analysis. BMC Infect Dis. 2018;18(1):1–11.
16. Ma XX, Galiana A, Pedreira W, Mowszowicz M, Christophersen I, Machiavello S, et al. Community-acquired Methicillin-resistant Staphylococcus aureus, Uruguay. Emerg Infect Dis [Internet]. 2006 Jun [cited 2019 Jul 24];11(6):973–6. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15963301
17. Pardo L, Machado V, Mollerach M, Mota MI, Tuchscherr LPN, Gadea P, et al. Characteristics of Community-Associated Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus (CA-MRSA) Strains Isolated from Skin and Soft-Tissue Infections in Uruguay. Int J Microbiol [Internet]. 2009 [cited 2019 Jul 24];2009:1–5. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20016669
18. Pardo L, Vola M, Macedo-Viñas M, Machado V, Cuello D, Mollerach M, et al. Community-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus in children treated in Uruguay. J Infect Dev Ctries. 2013;7(1).
19. Benoit SR, Estivariz C, Mogdasy C, Pedreira W, Galiana A, Galiana A, et al. Community strains of methicillin-resistant Staphylococcus aureus as potential cause of healthcare-associated infections, Uruguay, 2002-2004. Emerg Infect Dis [Internet]. 2008 Aug [cited 2019 Jul 20];14(8):1216–23. Available from: http://wwwnc.cdc.gov/eid/article/14/8/07-1183_article.htm
20. Pardo L, Machado V, Cuello D, Aguerrebere P, Seija V, Braga V, et al. Macrolide-lincosamide-streptogramin B resistance phenotypes and their associated genotypes in Staphylococcus aureus isolates from a tertiary level public hospital of Uruguay. Rev Argent Microbiol [Internet]. 2020;52(3):202–10. Available from: https://doi.org/10.1016/j.ram.2019.10.004
21. Pardo L, Vola M, Macedo-Viñas M, Machado V, Cuello D, Mollerach M, et al. Community-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus in children treated in Uruguay. J Infect Dev Ctries. 2013;7:10–6.
22. Van Rijen M, Bonten M, Wenzel R, Kluytmans J. Mupirocin ointment for preventing Staphylococcus aureus infections in nasal carriers. Cochrane Database Syst Rev. 2008;(4).
23. Iroa A, Da Rosa MJ, Telechea H, Menchaca A. Prevención de bacteriemia asociada a catéteres intravenosos en UCIN mediante la implementación de un protocolo de trabajo. Arch Pediatr Urug. 2015;86(2):106–12.
24. Medina-Presentado JC, Seija V, Vignoli R, Pontet J, Robino L, Cordeiro NF, et al. Polyclonal endemicity of Acinetobacter baumannii in ventilated patients in an intensive care unit in Uruguay. Int J Infect Dis. 2013;17(6):422–7.
25. Berg G, Rybakova D, Fischer D, Cernava T, Vergès MCC, Charles T, et al. Microbiome definition re-visited: old concepts and new challenges. Microbiome. 2020;8(1):1–22.
Publicado
2022-03-15
Cómo citar este artículo
Pardo Casaretto, L., Telechea, H., Martínez, Z., Perdomo, R., Pereira, B., Perini, A. B., Pica, M., Pires, A., Puschnegg, L., Giachetto, G., & Varela, G. (2022). Portación nasal de Staphylococcus aureus en el personal de salud de un Hospital Pediátrico durante julio-setiembre 2018. Anales De La Facultad De Medicina, 9(1), e201. https://doi.org/10.25184/anfamed2022v9n1a2
Sección
Artículos originales